01 血型
血型反映红细胞膜上遗传性细胞表面抗原的表达。犬已发现多种不同抗原，而特定抗原在受血者体内引发免疫反应的能力（即免疫原性）各不相同。本文不逐一详述所有已知血型。
犬最重要的血型系统为犬红细胞抗原（DEA）系统，其中最具免疫原性的抗原为DEA 1。DEA 1曾进一步分为DEA 1.1、1.2、1.3亚型，但现已明确，DEA 1系统表现为抗原表达从阴性到阳性的连续谱，而非不同抗原的独立表达。犬可能为DEA 1阴性（不表达DEA 1抗原）、DEA 1弱阳性（表达量低）或DEA 1强阳性（表达量高）。
全球范围内，DEA 1阳性犬普遍多于DEA 1阴性犬，但比例因品种和地域差异显著。犬通常不天然存在DEA 1同种抗体；若DEA 1阴性犬输入DEA 1阳性红细胞，受血者将在4～7天（或更短）内产生抗DEA 1抗体。这些抗体可致输注红细胞过早破坏，并使致敏的阴性犬在未来再次接受阳性血时发生溶血性输血反应。
因此，DEA 1阴性犬应优先输注DEA 1阴性红细胞。DEA 1阳性犬可接受DEA 1阴性或阳性红细胞，因其不会产生抗DEA 1抗体。DEA 1阴性红细胞适用于所有未输过血的犬，但该血源有限，应仅留给阴性受血者，除非绝对紧急。
建议在所有受血犬输注红细胞前，无论其输血史如何，均进行DEA 1血型鉴定及供-受者配型。除DEA 1外，部分血型在犬中极为常见，例如DEA 4，其表达于98–100%的犬红细胞膜上。
若罕见的DEA 4阴性犬输入红细胞，有98%的概率会接触到DEA 4阳性血，从而致敏产生抗DEA 4抗体；这不仅可导致输注红细胞提前破坏，还会使未来寻找相容血液极为困难。
同理，大多数犬呈Dal抗原阳性，但某些个体（尤其斑点犬、杜宾、西施和拉萨犬）缺乏该抗原。Dal阴性犬若输入Dal阳性血，同样可致输注红细胞早期破坏，并影响后续输血相容性。英国近期已可检测DEA 4与Dal血型，但目前尚无充分理由在非高风险品种中常规开展。
所采集的犬血浆不应含有临床意义的抗红细胞抗体，因为供血犬均为未输血个体且天然同种抗体罕见，故犬血浆输注前无需血型匹配。请注意，猫血浆中存在天然同种抗体，因此猫供血者与受血者在输注血浆前应进行血型配对。血小板输注是否需血型匹配尚存争议。英国宠物血库目前建议进行配对。单一血小板单位可能来自多个供体，且在制备过程中红细胞污染程度略高于其他血浆制品。鉴于尚无共识，作者建议在输注血小板前进行血型匹配。
02 交叉配血
尽管DEA 1是犬最公认的血型，红细胞上仍存在许多其他抗原；受血犬输血后可能对这些抗原产生不同程度的致敏，抗体生成时间不一（1～7天）。若日后输注不相合血液，即使DEA 1相容，也可能引发输血反应。因此，既往接受过红细胞输注的犬，再次输红细胞前必须进行交叉配血。
目前建议：只要受血犬在4～7天前曾输过红细胞，每次后续输血均需交叉配血，且终生如此。
主侧交叉配血将受血犬血浆与供血犬红细胞混合，检测是否出现凝集；次侧交叉配血则将受血犬红细胞与供血犬血浆混合。若主侧出现凝集反应，则禁止使用该供血犬红细胞，以免发生严重输血反应。
若次侧交叉配血出现反应，最好另选一个在主侧和次侧均相容的血液单位，但次侧不相容通常不会引发明显反应；事实上，许多次侧不相容可能是假性结果（如患犬自身凝集）。
目前有多种交叉配血方法，可靠性不一，操作者的经验也影响结果判读。条件允许时，建议送外部实验室进行交叉配血；院内仅用于紧急情况。
据作者所知，尚未有首次输血（包括DEA 1不合）的未输血犬在当时发生急性溶血性输血反应的确证病例。尽管实验室证据表明，未输血受血犬与潜在供血犬之间可能存在免疫不相容，兽医血液学与输血医学会输血反应小动物共识声明（TRACS）目前并不推荐对未输血受血者进行交叉配血。对于曾接受过红细胞、血小板或血浆的患者，在输注血浆或血小板时通常无需交叉配血（即无需将供血单位中的红细胞与受血者血浆进行主侧匹配）。该领域证据不足，无法给出明确建议，作者目前在上述情况下亦不进行交叉配血。
03 输血前考虑
与某些药物给药类似，血液制品可干扰实验室检测，因此除非危及生命，输注前必须采集相关样本。只要临床允许，建议完成血型鉴定、血常规（含新鲜血涂片，必要时做盐水凝集试验和Coombs试验）及生化全套（含肾功能、肝酶、白蛋白、球蛋白和胆红素）。
输注血小板或血浆时，还需基线凝血检查（血小板计数、凝血酶原时间PT、活化部分凝血活酶时间APTT），血小板输注另需血型。除血型及必要凝血项目外，只要已留样，无需等待全部检测结果即可输血。若时间允许，应尽可能完成额外基础检查，以评估个体动物的预后；例如，若犬患有出血性血管肉瘤且已广泛转移，其预后极差、长期存活率极低，此时是否输血需慎重考虑。此类情况易引发伦理困境，必须与宠主充分沟通并做好记录。
04 供血犬标准
英国政府已对用于血库储存的供血犬设定强制标准；该标准不适用于诊所内即时采血，而此类即时采血在临床中十分常见。表1列明了英国供血犬的具体要求。
表1：英国犬献血标准。
05 采血操作
如第一部分所述，使用商品化犬血单位通常是最高效、最实用的输血方式。但在某些特定情况下，诊所需自行采血，例如需要全血或无法及时从商业血库获得血液时。框1和框2总结了在诊所环境内采血的要点。
框1：供血犬采血所需设备
■ 理想4人：2人固定供犬，1人采血，1人管理采血袋
■ 电剪、稀释洗必泰、酒精棉
■ 局部麻醉霜或喷雾
■ 含相应抗凝剂的采血袋（250 ml或450 ml）
■ 或含适量抗凝剂的注射器（如为小型受血犬采少量血，可用枸橼酸磷酸葡萄糖腺苷）
■ 敷料与剪刀
■ 体重秤
框2：供血犬采血操作流程
■ 在颈静脉区域大面积剃毛并涂局部麻醉霜/喷雾，等待约45分钟
■ 按当地说明准备采血袋
■ 称量采血袋并去皮归零
■ 让供血犬侧卧于桌面软垫，轻柔保定
■ 戴手套，对相应颈静脉进行外科消毒
■ 助手抬高颈静脉，另一助手将血袋置于患犬下方
■ 将针头刺入颈静脉
■ 松开血袋管夹——血液开始流入
■ 助手定期轻摇血袋，使抗凝剂与血液充分混合
■ 血袋快满时，称重至250 ml（263 g）或450 ml（477 g），视袋规格而定；允许±10%容量偏差，以防枸橼酸中毒或体外凝血（即225–275 ml [237–289 g] 或405–475 ml [429–500 g]）
■ 夹闭管路，助手停止抬颈静脉
■ 缓慢拔针，无菌棉按压1–2分钟；必要时加轻颈绷带
■ 标签注明供体ID（或名字）、采集日期时间、采血员及血型
■ 室温保存，若需保留部分血小板活性，应在4–6 h内使用
■ 若采用无菌密闭系统采集，可2–6 °C冷藏保存35天，但血小板及止血功能会降低
■ 输注期间非必要不给药，以便区分药物反应与输血反应；必须用药时勿断开血液管路，应另建静脉通路■ 输注期间不喂食，减少呕吐/腹泻风险，避免误判为输血反应
06 血液制品输注流程
1. 准备
■ 输血前务必完成受血犬所有相关血样采集。
■ 全程戴手套，操作血液制品时保持无菌技术。
■ 血浆应在33–37°C水浴中解冻20–30 min；血袋须装入保护性塑料袋后置于水浴，温度>37°C可致蛋白变性。
■ 无水浴时可用干热法（如夹于腋下）；禁止微波，防止过热。
■ 浓缩红细胞（pRBC）无需主动加温；加温可增加溶血并促进细菌繁殖。
■ 对于小型犬、麻醉或低体温患犬，避免输注冷藏红细胞；应先在室温下回温。
■ 所有血液制品须经带滤器的输血器或注射器+延长管输注；若使用haemonate滤器，每输注50 ml血液制品必须更换一次滤器。
■ 使用输血器时，切勿挤压滴壶。
■ 若使用T型接头，尽可能移除无针注射端口，以降低红细胞通过时受损的风险。
■ 输血前最好带患犬散步，让其排尿/排便，因输血过程中不应断开血液管路。
■ 浓缩红细胞单位和已解冻血浆单位可分装，以便一单位用于多名患犬，或让同一患犬缓慢输注（见框3）。
框3：分装浓缩红细胞或解冻血浆
血液制品分装指南
所需设备
■ 输液架
■ 1单位犬pRBC或已解冻血浆
■ 检查手套、酒精棉片
■ 1个专用于血袋的无针穿刺接头
■ 无菌注射器（最好螺口锁）：每次抽取换用新注射器
■ 标签
准备pRBC/解冻血浆单位
■ 为受血者选择最合适的血单位
■ 洗手并戴手套
■ 轻摇血袋，使成分均匀
■ 将血袋挂于输液架
■ 撕下血袋端口之一的小盖，保持无菌
■ 无菌取出穿刺接头（关闭通气帽），插入血袋端口
抽取血液制品
■ 从无菌包装取出注射器；建议用20 ml注射器，50 ml不易操作且负压过大
■ 取下无针阀保护帽，置于无菌包装内备用
■ 注射器连接无针阀
■ 缓慢轻柔抽吸所需量，避免过大负压
■ 仅抽取所需量，余量留袋
■ 注射器加无菌堵头并贴标签
■ 可多次抽取，每次均换无菌注射器
■ 每次抽后，用酒精棉消毒血袋阀口
■ 抽毕，将保护帽盖回无针阀
储存
■ 注射器标签注明：日期、时间、品名、姓名缩写、有效期、编号、犬红细胞抗原状态
■ 分装后注射器应在4–5小时内使用；注射器不能储血，因气体可交换。已开口血袋可2–6 °C血库保存，≤24小时
■ 从冰箱取出后，每支注射器或已开口血袋（pRBC或解冻血浆）须4小时内用完
■ 检查污染征象：过多气泡、凝块、纤维蛋白丝、深紫至黑色变色；血浆呈灰色亦属异常，异常即弃。
例如：供多个受血者使用，或单次输注预计超过4小时而需延长给药时间
2. 输注
■ 尽量使用新置或未满24 h的静脉导管。
■ 禁止与含钙液体（如哈特曼液）同路输注。
■ 蠕动泵可增加红细胞溶血风险；需使用经厂家确认适用于红细胞的专用输液泵。无合适泵时，严密监测下可用重力滴注。
■ 小型犬禁用重力滴注，以防过快输注和循环超负荷；应使用注射器驱动器。
■ 延长管须用血液制品预冲。
■ 体重<5 kg犬，先以0.3 ml血液制品预冲T型接头，确保前15–30 min缓慢输注时患者仍能接收血液。
■ 起始15–30 min缓慢输注：0.25–0.5 ml/kg/h。
■ 若无输血反应，可据容量状态、合并症及紧急程度提速至2–10 ml/kg/h。
■ 紧急情况可按需尽快输注。
■ 血液制品启封后最多4 h内输完，除非分装处理（见框3）。■ 非必要勿在输注中途断开管路，以防污染。
07 输血监测
■ 输前记录基线：红细胞压积、总蛋白（TP）、黏膜颜色、血压、体温、脉搏、呼吸（TPR），并记录血清/血浆及尿液颜色
■ 前30分钟内每5–15分钟记录一次TPR，此后每30–60分钟一次；如有异常，立即停止输血并按输血反应处理流程执行大量输血（定义为3小时内输注血量超过患犬血容量的一半，或24小时内超过全血容量）会因抗凝剂用量大，增加低钙血症及低凝状态的风险。
08 输血反应
血液制品在很多情况下可挽救生命，但固有风险不可避免。输血反应类型、严重程度（从良性到致命）、发生时机（急性vs延迟）及所需干预各不相同。
文献中对输血反应的定义不一，导致识别、分类和记录困难，因此其发生率难以估算，不同物种、定义及血品报告为0–38%。2021年发布的TRACS对输血反应的定义、临床表现、预防、监测、诊断与治疗提供了全面概述，表2列出了各类输血反应的定义。
表2：输血反应：定义与病因。
发热是输血过程中最常见的变化之一，可见于非溶血性发热性输血反应、溶血性输血反应、输血传播感染（TTI）及输血相关急性肺损伤（TRALI）；也可源于基础疾病，如脓毒症或免疫介导性溶血性贫血（IMHA）。
不同情况严重程度与处理各异，需先明确发热原因再采取措施。非溶血性发热反应不危及生命，但为排除性诊断，需多步评估以决定是否继续或停止输血。
输血相关循环超负荷（TACO）在临床亦较常见；血浆制品产生胶体渗透压，较浓缩红细胞和晶体液更易致容量超负荷。许多受血犬血容量正常，更易发生容量过载，因此强调成分输血以减少输注量。
其他常见输注期表现包括呼吸困难、心动过速（可伴或不伴低血压）、呕吐、血管性水肿、荨麻疹、瘙痒或过敏性休克征象（胃肠道症状、胆囊壁水肿、血性腹水或皮肤反应）。图1提供了处理输血反应的流程图。无证据支持输血前用抗组胺药预处理，故不推荐此做法。
图1：输血过程中常见临床体征的流程图。按颜色箭头判断最可能的输血反应类型及所需处理。AHTR，急性溶血性输血反应；CXR，胸部X线；ddx，鉴别诊断；FNHTR，非溶血性发热性输血反应；GI，胃肠道；HyTR，低血压性输血反应；iCA，离子钙；IV，静脉注射；LA:Ao，左房-主动脉血流比；NT-proBNP，N末端B型利钠肽前体；SPO₂，血氧饱和度；TACO，输血相关循环超负荷；TAD，输血相关呼吸困难；TPR，总外周阻力；TPOCUS，床旁胸部超声；TRALI，输血相关急性肺损伤；TTI，输血传播感染。
09 常见问题
问：能否同时输注不同血制品，如浓缩红细胞与新鲜冰冻血浆？
答：最好一次只输一种；若发生反应，可迅速锁定原因。紧急情况下可同输多种。
问：输血后何时复查PCV/TP以评估效果？答：旧观点认为血红蛋白平衡需数小时，但人与犬研究均显示输后即刻PCV与数小时后无差异，故可即刻或3–4 h后检测；若持续失血，解读结果时应予考虑。
10 总结
血制品虽可救命，但伴风险，部分可致命。须了解潜在危害，仅于指征明确时使用，并以最安全方式输注。牢记血液极为珍贵，仅限合适临床场景使用。
参考文献：Threlfall, A. and Ekkebus, S. (2025), Canine blood transfusion in the UK. Part 2: putting theory into practice. In Practice, 47: 516-525.