01 简介
在兽医临床环境中，心肺复苏术（CPR）是唯一能让心肺骤停（CPA）的猫狗恢复自主循环的实用方法。因此，兽医专业人员必须了解如何实施最佳CPR，以延长急性、可逆性CPA患者的生命。
来自单家急诊或转诊兽医院的报告显示，接受CPR的猫狗存活率很低，狗的存活率为5%-7%，猫的存活率为1%-19%。与麻醉等急性、可逆性原因相关的猫狗CPR的存活率要高得多。因此，有必要改进小动物兽医界的CPR实践，尤其是在实施选择性麻醉程序的地方。
兽用CPR重新评估运动倡议（RECOVER）于2012年制定并发布了首个基于证据的RECOVER CPR指南。从那时起，2012年RECOVER CPR指南中推荐的程序已被广泛接受为犬猫CPR的国际兽医标准。已有8万多人完成了在线RECOVER CPR培训，其中1.1万多人根据2012年指南完成了现场救护员认证，成为RECOVER认证基本生命支持（BLS）救护员和RECOVER认证高级生命支持（ALS）救护员。
自《2012 RECOVER CPR指南》发布以来，更多的人类、犬、猫和其他研究为更新和充实该指南提供了证据。因此，RECOVER试图通过详尽的证据评估、分析和总结来修订针对犬猫的RECOVER CPR指南。
本文件中包含的治疗建议是BLS、ALS和监护（MON）领域的最终成果。重要的治疗建议更新如下：
（1）使用3种技术中的任何一种对猫和小型犬进行胸外按压：
- 双拇指环绕按压法
- 单手掌按压法
- 单掌根部按压法
（2）当患者处于背卧位时，胸外按压深度为25%（而不是33%-50%）。
（3）对于未插管的猫狗，使用面罩进行呼吸，并在有氧气的情况下补充氧气。
（4）对于未插管的猫狗，在没有面罩的情况下：
- 当施救者面临的风险较低时，进行口对鼻呼吸
- 当施救者面临的风险较高或未知时，只进行胸外按压
（5）优化循环支持（胸外按压技术、输液疗法、血管收缩剂），使ETco2≥18 mmHg。
（6）不再建议使用大剂量肾上腺素（0.1 mg/kg）；如果使用肾上腺素，建议剂量为0.01 mg/kg。
（7）如果使用阿托品，请在CPR早期使用一次，不要重复使用。
（8）对于有可电复律的患者，如果第一次除颤尝试后仍有可电击心律，则从第2次电击开始：
- 将初始除颤能量增加一倍，并在随后的所有电击中保持此剂量
- 考虑每隔2分钟使用标准剂量的肾上腺素或血管加压素来支持血管运动张力
- 考虑使用艾司洛尔负荷剂量进行恒速输注
- 考虑给予抗心律失常药物（猫用胺碘酮，狗用利多卡因）
02 猫狗CPR的治疗建议
表1包含所有新版和更新版RECOVER CPR指南中有关BLS、ALS和MON领域的内容，以及2012指南中6项未在当前版本中更新的建议。
| 治疗建议 | 推荐强度 | 证据质量 | PICO |
| BLS | |||
| 启动CPR | |||
| 对于呼吸暂停、反应迟钝的犬猫，建议在不尝试触诊股动脉或心尖脉搏的情况下开始 BLS。 | 强 | 很低 | MON-11 |
| 对于犬猫的单人救援者CPR，在开始胸外按压前，建议首先进行气道评估（摇晃和呼叫）。 | 强 | 专家意见 | BLS-11 |
| 对于犬猫的多人救援者CPR，建议立即开始胸外按压，以评估气道并开放气道。 | 强 | 很低 | BLS-11 |
| 对于犬猫的多人救援者CPR，建议在开始胸外按压后尽快评估气道并对动物进行气管插管。 | 强 | 专家意见 | BLS-11 |
| 体位和胸外按压点 | |||
| 建议非宽胸犬于侧卧位进行胸外按压。 | 强 | 很低 | BLS-04 |
| 建议对宽胸犬进行侧向胸外按压，重点放在胸部最宽的部分，直到气管插管就位并固定。 | 弱 | 专家意见 | BLS-05 |
| 对于背卧位置稳定的宽胸犬，建议在暂停期间将犬移至背卧位，并在放置气管插管后直接在心脏上方的胸骨上进行胸外按压。 | 弱 | 专家意见 | BLS-05 |
| 建议对中到大型龙骨胸犬进行胸外按压，并将手放在心脏上。 | 强 | 很低 | BLS-03 |
| 建议在中到大型圆胸犬的胸部最宽处进行胸外按压，将手放在胸部最宽的部分。 | 弱 | 很低 | BLS-02 |
| 建议猫和小型犬使用以下3种方法中的一种进行胸外按压，该方法基于按压者偏好和实时灌注标志物（如ETco2、直接血压监测）： | |||
| a）使用双拇指环绕按压技术，动物处于侧卧状态，两个拇指直接放在心脏上 | 强 | 很低 | BLS-12 |
| b）使用单手掌按压技术，用惯用手在心脏水平环绕胸骨，在拇指和另外四指之间进行按压 | 强 | 专家意见 | BLS-12 |
| c）使用单手掌根部按压技术，惯用手的手掌根部在心脏区域按压胸部宽度的三分之一到二分之一，动物处于侧卧状态，非惯用手支撑背侧胸部 | 强 | 专家意见 | BLS-12 |
| 按压的速率和技巧 | |||
| 建议在对犬猫进行CPR期间使用每分钟100-120次的按压速率。 | 强 | 很低 | BLS-07 |
| 对于侧卧位的犬猫，建议按压深度为胸部侧径的1/3到1/2。 | 强 | 很低 | BLS-18 |
| 对于背卧位的犬猫，建议按压深度为胸部前后直径的四分之一。 | 强 | 很低 | BLS-18 |
| 建议在接受CPR的犬猫的胸外按压期间允许完全胸壁回弹。 | 强 | 中度 | BLS-01 |
| 建议将犬猫CPR周期的按压与回弹的比例控制为50:50。 | 强 | 中度 | BLS-01 |
| 建议不要对犬猫使用主动加压-减压CPR。 | 强 | 专家意见 | BLS-06 |
| 通气 | |||
| 对于正在进行CPR或在单人CPR过程中未插管的犬猫，建议在可行且安全的情况下，在胸外按压暂停期间提供人工呼吸。 | 强 | 很低 | BLS-10 |
| 对未插管的犬猫进行CPR时，建议使用面罩和手动复苏器进行人工辅助呼吸。 | 强 | 很低 | BLS-10 |
| 对于未插管且对施救者风险（如可能感染人畜共患病或接触麻醉剂）极低的犬猫进行CPR时，如果没有面罩和手动复苏器，建议通过口对鼻技术进行人工呼吸。 | 强 | 很低 | BLS-10 |
| 对于未插管但可能会给施救者带来风险（如可能感染人畜共患病或接触麻醉剂）的犬猫，如果没有面罩和手动复苏器，建议只进行胸外按压。 | 强 | 专家意见 | BLS-10 |
| 建议对未插管的犬猫进行CPR时，胸外按压与通气的比例为30次胸外按压：2次呼吸（30:2）。 | 强 | 很低 | BLS-09 |
| 在对插管的犬猫进行CPR时，建议呼吸频率为每分钟10次。 | 强 | 很低 | BLS-14 |
| 建议在对插管的犬猫进行CPR时，以10 mL/kg的潮气量和1秒钟的吸气时间进行正压通气。 | 强 | 很低 | BLS-13 |
| 建议吸气压力峰值应能产生明显但不过多的胸廓隆起。 | 强 | 专家意见 | BLS-19 |
| 在对犬猫进行CPR时，使用Fio2为1.0（100%氧气）是合理的。 | 获益远大于风险 | 研究群体有限 | 2012 指南 |
| 在对犬猫进行CPR时，可考虑使用0.21的Fio2（21%氧气-空气）。 | 获益≥风险 | 研究群体有限 | 2012 指南 |
| 对于在接受机械通气时出现CPA的犬猫，建议改用手动通气。 | 弱 | 专家意见 | BLS-20 |
| 建议不要常规使用超过40 cmH2O的吸气峰值压力。 | 强 | 专家意见 | BLS-19 |
| 如果在对犬猫进行CPR时使用呼吸机进行呼吸，则应调整呼吸机设置以确保进行呼吸（如容量控制模式；TV 10 mL/kg；RR 10/min；PEEP 0 cmH2O；压力限制40 cmH2O；检测不到呼吸的触发灵敏度-10 cmH2O）。 | 强 | 很低 | BLS-20 |
| CPR周期 | |||
| 对于正在进行CPR的插管犬猫，建议以2分钟为周期持续进行高质量的胸外按压。 | 强 | 专家意见 | BLS-08 |
| 建议在对插管的犬猫进行CPR时，单个施救者的胸外按压周期不要超过2分钟。 | 强 | 低 | BLS-15 |
| 建议如果一名施救者感觉到自己开始疲劳，或如果其他施救者感觉到胸外按压质量不佳，则可在一个周期内更换按压者，同时尽量减少胸外按压的中断时间（<1秒）。 | 强 | 专家意见 | BLS-15 |
| 建议在对犬猫进行CPR时，尽量减少按压周期之间的停顿（<10秒）。 | 强 | 低 | BLS-16 |
| 建议只有在以下两种情况下怀疑恢复自主循环时，才中断胸外按压循环：(1) ETco2突然持续大幅增加（如增加≥10 mmHg，达到≥35 mmHg）；(2) 有证据表明动脉脉搏与胸外按压不同。 | 弱 | 专家意见 | BLS-17 |
| 在没有二氧化碳浓度监测仪数据的情况下，建议即使怀疑恢复自主循环，也不要中断胸外按压。 | 强 | 专家意见 | BLS-17 |
| ALS | |||
| 二氧化碳监测 | |||
| 在对犬猫进行CPR时，如果出现波形并持续检测到二氧化碳，则使用连接到呼吸回路的波形二氧化碳监测记录仪检测ETco2就足以确认ETT安放是否正确。 | 强 | 很低 | MON-01 |
| 在装有二氧化碳检测装置的情况下对犬猫进行CPR时，ETco2≥12 mmHg可能表明ETT安放正确；如果ETco2<12 mmHg，建议施救者通过其他方法确认气管插管的位置。 | 强 | 很低 | MON-01 |
| 对于正在进行CPR且使用二氧化碳检测设备的插管犬猫，如果在进行高质量胸外按压的情况下ETco2仍为0或非常低（如<5 mmHg），建议通过其他方法（如直接观察管道通过杓状软骨的情况或在胸外按压停顿期间进行肺部听诊）确认气管插管的位置，并在有必要时重新插管。 | 强 | 很低 | MON-01 |
| 建议在对犬猫进行CPR时，持续测量ETco2以指导胸外按压质量。 | 强 | 很低 | MON-07 |
| 建议优化CPR，最大限度地提高正在进行CPR的犬猫的ETco2，使其不低于18 mmHg。 | 强 | 很低 | MON-10 |
| 给药途径 | |||
| 建议CPR药物最好通过静脉导管而不是骨内导管给药。 | 强 | 很低 | ALS-14 |
| 如果在2分钟内尝试静脉注射仍不成功，建议救援人员放置骨内导管，并在有足够人员的情况下同时尝试静脉注射和骨内途径。 | 弱 | 很低 | ALS-14 |
| 对于无法进行静脉或骨内注射的动物，可考虑通过气管内途径注射肾上腺素、血管加压素或阿托品。 | 获益≥风险 | 研究群体有限 | 2012-ALS09 |
| 如果在CPR期间使用气管内途径给药，则应使用生理盐水稀释药物，并通过比ETT更长的导管给药。 | 获益>>>风险 | 研究群体有限 | 2012-ALS09 |
| 血管加压素 | |||
| 建议在对犬猫进行CPR时使用肾上腺素治疗非休克性心律。 | 强 | 低 | ALS-06 |
| 建议以3-5分钟的标准剂量间隔注射肾上腺素。 | 弱 | 很低 | ALS-07 |
| 建议在对犬猫进行CPR时不要常规使用大剂量肾上腺素。 | 强 | 低 | ALS-08 |
| 建议在首次尝试除颤之前，不要对有可电击节律的犬猫使用肾上腺素。 | 强 | 很低 | ALS-16 |
| 建议对第一次电击后仍有可电击节律的犬猫使用血管加压素（0.8 U/kg，如果没有血管加压素则使用肾上腺素0.01 mg/kg）。 | 弱 | 专家意见 | ALS-16 |
| 阿托品 | |||
| 建议对非休克性停搏节律的犬猫进行CPR时，可注射一次阿托品（0.04 mg/kg，静脉或骨内注射）。 | 弱 | 低 | ALS-09 |
| 建议如果使用阿托品，应在CPR过程中尽早给药。 | 强 | 很低 | ALS-09 |
| 建议不要在CPR过程中对非休克性停搏节律的犬猫重复使用阿托品。 | 强 | 很低 | ALS-09,ALS-19 |
| 电除颤 | |||
| 对于有可电击节律的犬猫，建议使用双相除颤仪，而非单相除颤仪。 | 强 | 很低 | ALS-11 |
| 建议对于有可电击停搏节律的犬猫，如果最初的标准剂量（2 J/kg）电除颤不成功，则第二次和随后的电击剂量应为最初剂量的2倍（4 J/kg）。 | 强 | 低 | ALS-12 |
| 抗心律失常药 | |||
| 建议在首次电击无效后，对出现难治性无脉室性心动过速或心室颤动的狗静脉注射利多卡因（2 mg/kg）。 | 弱 | 中度 | ALS-01 |
| 如果没有利多卡因，建议在对首次电击无效的无脉室性心动过速或心室颤动犬进行CPR时静脉注射胺碘酮（5 mg/kg）。 | 弱 | 很低 | ALS-02 |
| 建议不要在犬中使用含有聚山梨醇酯-80的胺碘酮制剂，因为这些制剂对血液动力学有不良副作用。 | 强 | 中等 | ALS-02 |
| 建议对于难治性无脉室性心动过速或心室颤动的猫，可在CPR期间静脉注射胺碘酮（5 mg/kg）。 | 弱 | 很低 | ALS-02 |
| 建议在首次电击无效后，不应对难治性无脉室性心动过速或心室颤动的猫静脉注射利多卡因。 | 弱 | 中度 | ALS-01 |
| 建议对首次除颤后仍无法转复为可电击节律的犬猫施用艾司洛尔（0.5 mg/kg，静脉或骨内注射，3-5分钟，然后以50 μg/kg/分恒速输注）。 | 弱 | 很低 | ALS-03 |
| 其他药物和干预措施 | |||
| 对于最近服用阿片类药物后出现CPA的犬猫，建议一旦启动BLS和其他优先ALS干预措施，就应注射纳洛酮（0.04 mg/kg，静脉或骨内注射）。 | 强 | 很低 | ALS-13 |
| 对于接受过可逆性麻醉/镇静药物治疗的犬猫，可考虑在CPR过程中使用逆转剂。 | 获益≥风险 | 研究群体有限 | 2012-ALS13 |
| 建议不要在CPR期间对血容量正常的犬猫使用静脉输液治疗。 | 强 | 很低 | ALS-10 |
| 建议在CPR期间对已知或疑似低血容量的犬（20 mL/kg等渗晶体液或等效物）猫（10-15 mL/kg等渗晶体液或等效物）使用静脉输液治疗。 | 强 | 专家意见 | ALS-10 |
| 对于CPR中的犬猫，建议在CPR过程中监测血浆离子钙。 | 弱 | 专家意见 | MON-09 |
| 对于有低钙血症（离子钙<0.8 mmol/L）记录的CPA犬猫，建议使用10%葡萄糖酸钙（50 mg/kg，静脉或骨内注射，2-5分钟）或10%氯化钙（15 mg/kg，静脉或骨内注射，2-5分钟）。 | 弱 | 专家意见 | MON-09 |
| 建议无论停搏节律如何，都不要在犬猫CPR中常规使用钙剂。 | 强 | 很低 | ALS-15,MON-09 |
| 如果已知或怀疑高钾血症是导致心跳骤停的原因，建议给予单剂量10%葡萄糖酸钙（50 mg/kg，静脉或骨内注射，2-5分钟）或10%氯化钙（15 mg/kg，静脉或骨内注射，2-5分钟）。 | 强 | 很低 | ALS-15 |
| 建议不要在CPR过程中常规使用糖皮质激素。 | 弱 | 很低 | ALS-04 |
| 对于CPR时出现血管加压抵抗性低血压或疑似肾上腺皮质功能减退的犬猫，建议在CPR期间静脉注射糖皮质激素。 | 弱 | 专家意见 | ALS-04 |
| 建议在CPR期间测量犬猫体内的钾浓度。 | 弱 | 很低 | MON-08 |
| 建议在CPR过程中，如果怀疑犬猫出现严重的血钾异常，应尽早测量其血钾浓度。 | 强 | 专家意见 | MON-08 |
| 对于使用动脉导管的CPA犬猫，建议优化BLS和ALS干预措施，最大限度地将舒张压控制在不低于30 mmHg。 | 强 | 很低 | MON-12 |
| 在CPA超过10-15分钟后，可考虑使用1 mEq/kg碳酸氢钠进行碱化治疗。 | 获益≥风险 | 研究群体有限 | 2012-ALS16 |
| 开胸心肺复苏术（OCCPR） | |||
| 建议对腹腔、胸膜或心包腔内有大量积液或积气的犬猫进行OCCPR。 | 强 | 专家意见 | ALS-05 |
| 建议对接受腹部或胸部手术的犬猫进行直接心脏按摩。 | 强 | 低 | ALS-05 |
| 建议对胸腔穿透性创伤或胸部压迫点或附近肋骨骨折的犬猫进行OCCPR。 | 弱 | 很低 | ALS-05 |
| 对于中型和大型犬的圆胸犬和宽胸犬，如果可以进行OCCPR且主人可以接受，建议立即开始闭胸CPR，并尽快开始OCCPR。 | 强 | 低 | ALS-05 |
| 建议只有在猫和小型犬（<15 kg）患有胸膜或心包疾病、穿透性胸部创伤、正在接受腹部或胸部手术或闭胸CPR不充分时，才尝试对其进行OCCPR。 | 弱 | 专家意见 | ALS-05 |
| 如果诊所提供OCCPR并且患者有此指征，应对任何有CPA风险的犬讨论实施OCCPR的利弊。 | 强 | 专家意见 | ALS-05 |
| 预防心肺骤停和再次发作 | |||
| 建议对心动过缓导致血流动力学受损的犬猫使用阿托品（0.04 mg/kg，静脉或骨内注射），以防止病情恶化为CPA。 | 强 | 专家意见 | ALS-09 |
| 建议对使用阿片类药物后出现心动过缓和/或反应迟钝的非CPA犬猫立即施用纳洛酮（0.04 mg/kg，静脉或骨内注射）。 | 强 | 很低 | ALS-13 |
| 建议在心跳骤停后连续测量血浆乳酸浓度。 | 强 | 很低 | MON-02 |
| 建议在心跳骤停后连续测量血浆乳酸浓度，以指导和评估犬猫对治疗的反应。 | 强 | 专家意见 | MON-02 |
| 建议在已知或怀疑存在低血糖或高血糖的犬猫恢复自主循环后测量血糖浓度。 | 强 | 专家意见 | MON-03A |
| 建议在自主循环恢复后尽早测量犬猫的血糖浓度。 | 弱 | 很低 | MON-03A |
| 建议在心跳骤停后尽快测量血清肌酐浓度，作为急性肾损伤的指标，随后在住院期间，对恢复自主循环的犬猫进行不少于每24小时一次的测量。 | 强 | 很低 | MON-03B |
| 建议经常或持续监测有CPA风险的患者的血压，包括麻醉中、休克中和心跳骤停后的患者。 | 强 | 很低 | MON-04 |
| 建议有CPA风险的患者在可行的情况下使用持续、直接的动脉血压监测。 | 弱 | 很低 | MON-04 |
| 对于有CPA风险的犬猫（如麻醉、休克、呼吸窘迫、恢复自主循环后），建议不要仅使用脉搏血氧计进行监测。 | 强 | 很低 | MON-05 |
| 对于有CPA风险的犬猫（如处于麻醉状态、休克、呼吸困难、恢复自主循环后），建议在持续监测脉搏氧饱和度的同时，持续或频繁监测其他生命参数，如呼吸频率、心率以及动脉血压。 | 弱 | 很低 | MON-05 |
| 对于全麻的猫，建议持续监测脉搏氧饱和度或脉搏质量。 | 强 | 很低 | MON-05 |
| 在无法获得脉搏氧饱和度读数且排除了患者移动和非患者因素的情况下，建议通过其他方法（如脉搏触诊、血压测量、心电图监测、呼吸暂停监测、血浆乳酸浓度测量、心脏超声）评估灌注状态。 | 强 | 专家意见 | MON-05 |
| 建议对有CPA风险的犬猫进行持续心电图监测（如麻醉中、休克、呼吸困难、恢复自主循环后、有吸入风险）。 | 强 | 很低 | MON-06 |
03 用于猫狗的BLS技术
BLS的目的是通过胸外按压和间歇性正压通气（IPPV）支持心肺系统。除非下达了“不要抢救”的命令，否则应该对无反应和呼吸暂停（MON-11）的猫狗启动BLS。实施BLS的方法因患者特征、可用设备和用品以及救援人员数量而异。
1. 在任何环境下启动单人抢救BLS
当遇到无反应的患者时，施救者应呼救，用力刺激患者，如果没有反应，则确定患者是否有呼吸（图1）。
如果患者出现呼吸骤停，且只有一名救援人员可以启动BLS，我们建议救援人员评估患者的气道，如果安全，在开始胸外按压之前尝试清除任何明显的气道阻塞（BLS-11）。
患者评估和气道评估应尽可能简短，以便胸部按压延迟时间不超过10-15秒。在单人救护BLS中，我们建议按压与通气 (C:V) 的比例为30次按压：2次呼吸 (30:2)（BLS-09）。施救者以建议的速度进行30次胸外按压，然后在不超过几秒钟的胸外按压暂停期间进行2次呼吸，并立即开始新一轮的30次胸外按压。如此循环往复，直到其他抢救人员到达、恢复自主循环或抢救工作终止。
未插管的猫狗应使用配有手动复苏器 (BLS-10) 的面罩进行通气。如果有氧气，可以补充氧气。如果没有面罩，我们建议使用口对鼻技术进行人工呼吸，除非施救者面临风险（如人畜共患病或麻醉剂过量）（BLS-10）。
进行人工呼吸时，动物的颈部和头部应与脊柱保持一致，以避免阻塞气道。如果施救者认为进行口对鼻人工呼吸存在个人风险，则应只进行胸外按压（BLS-10）。
2. 在临床环境中启动多救护人员BLS
大多数兽医CPR事件都发生在临床环境中，而且许多事件都发生在有两名或两名以上兽医专业人员可用的环境中，这为多人CPR提供了便利。
当有多名施救者可启动BLS时，一名施救者应立即开始胸外按压，另一名施救者则应评估患者的气道 (BLS-11)。如果发现明显的上呼吸道阻塞，应在安全可行的情况下将其移除，或采用其他方法（如气管切开术）建立通畅的气道。无论哪种情况，都应尽快为患者进行气管插管 (BLS-11)。
如果可能，应通过直视下气管内插管（ETT）穿过杓状软骨来确认。应将ETT固定到位，通常是在耳后扎紧。对于中鼻或长鼻犬，在口鼻背侧扎紧也有效。固定好ETT后，应给充气罩囊充气，以形成气密性密封，从而进行正压通气。多救护人员BLS应以2分钟为周期进行胸外按压，同时进行IPPV。
3. 为猫狗进行胸外按压
（1）患者体位
大多数狗和猫在侧卧位进行胸外按压（BLS-04、BLS-05、BLS-12）。宽胸犬（如英国斗牛犬）会自然呈现背卧位，可以在这种姿势下进行胸外按压（BLS-05；图2）。
（2）按压者体位
在对中型到大型犬进行胸外按压时，无论患者的身体位置如何，按压者都应将肘部锁定在伸直状态，将手腕锁定在屈曲状态，并将肩膀垂直于手腕上方（图3）。
在加压和减压阶段，肩膀都应保持垂直于手腕的位置。当动物躺在标准手术台或轮床时，要求大多数施救者站在凳子上，以实现正确的体位。按压者使用腹部核心肌肉进行按压，同时保持肘部伸直，这样可以增加胸部按压力并减轻疲劳。
如果动物躺在地板上，按压者可以膝盖跪地。如果治疗台足够结实和宽大，按压者也可以在治疗台上，只要肩膀仍然在手腕的正上方即可。对于猫和小型犬来说，按压者的身体位置没有手的位置那么重要，因为胸部顺应性的增加会使胸外按压更加容易。
（3）按压者的手的位置
要对中型到大型犬进行胸部按压，按压者的手掌根部应重叠，接触胸部的位置应在下面描述的按压点上。手指可以交错或重叠握在一起，但不应在胸廓上扇形展开。图4展示了一个合适的手部位置示例，手掌根部重叠，手指交错。
对于中型到大型龙骨胸犬（如八哥犬），我们建议将按压者重叠的双手放在犬心脏的正上方（BLS-03）（图5）。要在犬处于侧卧位时确定心脏的位置，应将肱骨向尾部旋转，使肘部尾端点位于胸骨和脊柱之间大约三分之一的距离处。在此位置，心脏位于肘部点的下方。将手放在心脏上方可对心室施加压力，帮助在按压过程中将血液挤入肺动脉和主动脉。
对于寻回猎犬和比特犬等中型到大型的圆胸犬，我们建议将压迫者重叠的手掌根部放在胸廓最宽的部分（BLS-02）（图6）。对胸部最宽部分进行胸外按压时产生的胸内压力变化会在按压过程中迫使血液流入主动脉和大肺静脉，并使心脏、胸腔内血管和肺循环在减压过程中重新充满血液。
对于猫和小型犬，双手重叠胸外按压可能会过度挤压心脏。因此，在对这些动物进行胸外按压时，我们建议使用以下3种方法中的1种，并结合按压者的偏好和可用的实时血流灌注指标（BLS-12）。
双拇指环绕按压法将心脏按压在同侧双手的拇指和四指之间（图7A）。单手掌按压法是将心脏按压在缠绕胸骨部分的惯用手拇指和四指之间，非惯用手则支撑背侧胸腔（图7B）。单手掌根部按压法是将心脏按压在惯用手的手掌根部下方，非惯用手支撑背侧胸腔（图7C）。
虽然图7中的图像都展示了侧卧位时的胸部按压技术，但单手掌根部按压法也可以在宽胸幼犬等情况下进行，即拇指放在胸骨上，四指从背侧按压。
（4）按压的速度和深度
对狗和猫的胸部按压速度为100-120次/分（BLS-07）。对于侧卧位的犬猫，我们建议胸外按压的深度为按压点胸廓宽度的三分之一到二分之一（BLS-18）。对于背卧位的犬猫，我们建议在按压点将胸腔按压至胸廓深度的四分之一（BLS-18）。在两次按压之间，按压者必须允许胸廓完全回弹，以便心脏重新充血（BLS-01）。
4. 2分钟胸外按压周期
对于插管的狗猫，CPR采用不间断的2分钟循环胸外按压（BLS-08）。我们建议单个施救者的胸外按压周期不要超过2分钟（BLS-15），如果按压者或其他团队成员感觉到按压者开始疲劳，可以在周期中途切换按压者，同时尽量减少胸外按压的中断时间（<1秒）（BLS-15）。在2分钟的胸外按压周期之间切换按压者的停顿时间应尽可能短，以最大限度地减少脱手时间，目标是少于10秒（BLS-16）。
04 用于猫狗的ALS技术
表1详细列出了ALS治疗建议，并在下文CPR流程中进行了说明。表2列出了除颤和CPR过程中常用药物的剂量。
05 CPR流程的概念和开发
对猫狗CPR的主要流程和治疗建议进行了更新（图8）。流程不仅在内容上有所改变，而且在设计和目的上也有所改变。2012年的CPR流程包含图文，用于向施救者传授CPR技术。修订版则设计为认知辅助工具，供临床CPR过程中参考。
2023年夏季，流程草案连同治疗建议在recoveryinitiative.org上公布，征求意见期为4周。在征求意见期结束后，联合主席对意见进行了审议，并试图通过对某些内容进行重组来修正辅助工具。最终版本刊载于本指南中。
此外，还更新了猫狗CPR期间推荐的药物和剂量（表2）。我们建议在可能实施CPR的小动物临床环境中张贴或以其他方式方便使用该流程和药物剂量表，例如分诊区、急诊室、重症监护室、麻醉诱导和恢复区、手术室、心脏手术室以及其他类似场所。
06 识别心肺骤停并启动BLS的流程
根据公众对流程草案的意见，联合主席创建了一个单独的流程，以帮助兽医专业人员识别CPA（图1）。在流程图的顶部，救援人员发现了一名昏倒的患者，并呼唤团队支持（“呼叫帮助”）。然后“摇晃并呼喊”，试图唤醒动物。
如果动物有反应，说明患者没有经历CPA，救援人员应继续进行初步检查。如果动物对刺激没有反应，救援人员应评估呼吸是否正常。如果动物呼吸规律，则说明它没有经历CPA，应继续进行初级检查。如果动物存在不规则的呼吸或激动的“喘息”，应归类为“无”呼吸。
当救援人员认为动物没有反应且没有规律的呼吸时，应立即开始CPR（MON-11）。单人施救者从图表左侧开始评估动物的气道。如果气道通畅，施救者立即开始单人BLS（BLS-11）。如果发现上气道阻塞，救援人员应在认为安全的情况下首先清理气道，然后开始单人BLS。
如果在诊断出CPA时有2名或更多救援人员可用，他们应按照流程的右侧进行操作：救援者1开始胸外按压，救援者2评估气道，必要时清理气道，并开始呼吸支持（BLS-11）。
07 犬猫CPR流程
本流程适用于可以进行气管插管且有3名或更多救援人员的临床环境。下文的解释旨在引导读者了解该流程。
1. 启动BLS
该流程从顶部标有“开始BLS”的蓝色方框开始。施救者开始一个完整的2分钟BLS循环，以100-120次/分的速度开始①胸外按压（BLS-07）。在其他救援人员执行其他干预措施时，应不间断地进行高质量的2分钟循环胸外按压（BLS-08）。
在第一名救援人员进行胸外按压的同时，另一名小组成员应②在动物当前的仰卧状态下为其插管、绑扎ETT并为面罩囊充气。ETT的正确放置可通过毛细血管造影术进行确认。通气速度应为每分钟10次，或每6秒钟呼吸一次（BLS-14）。每次吸气应持续1秒，呼气阶段留出5秒（BLS-13）。
可使用手动复苏袋或呼吸回路（如麻醉机）进行通气。使用100%氧气进行通气是合理的，但如果没有现成的补充氧气供应，也可以考虑使用室内空气进行通气。如果使用手动复苏袋，必须为患者选择合适的尺寸，并确保弹出阀正常工作，以防止肺部过度充气。如果使用麻醉回路，则应在呼吸时关闭截止阀，并使用回路压力表在胸外按压时提供30-40 cmH2O的气道峰值压力（BLS-19），这可确保有足够的气道压力来克服胸外按压压力，同时将气压创伤的风险降至最低。
一旦呼吸完毕，应打开截止阀，直到下一次呼吸。使用麻醉回路时，在胸外按压周期之间的短暂停顿期间，气道压力表上的峰值应保持在20 cmH2O以下。在 “暂停和检查”（BLS-19）中进行评估时，每次呼吸都应导致明显但不过多的胸部隆起。一旦开始BLS，前2名以外的救援人员应尽快启动ALS。如果队伍足够大，可以在启动BLS的同时启动 ALS。
2. 启动ALS
ALS的第一步是③使用心电图和波形二氧化碳通气记录仪进行监测。任何心电图导联均可使用，侧支或主气管均可。
应开通血管通路④。如果可以进行静脉注射（ALS-14），直接静脉通路比骨内通路更可取。如果无法在2分钟内获得静脉通路，建议救援人员在进行骨内导管插入的同时，在人员允许的情况下继续尝试静脉通路（ALS-14）。如果无法开通血管通路（2012-ALS09），则可进行气管内给药，但静脉注射或骨内途径优于气管给药。
任何适用的逆转剂⑤都应作为启动ALS的最后一步进行给药（ALS-13；2012-ALS13），剂量列于表2。
无论骤停原因如何，启动CPR的这5个步骤应按照指示的顺序进行。即使CPA与可逆性药物有关，简单使用逆转药物也不会恢复自主循环。只有向心脏输送足够的氧气，才能恢复自主循环。因此，对于无论何种原因导致的CPA动物，高质量的BLS以及适当的心律诊断和ALS治疗（如除颤和血管加压素给药）始终是重中之重。
我们建议在第一次除颤尝试之前不要对有可电击心律的动物使用肾上腺素（ALS-16）。因此，只有在已知犬猫在心跳停止时有不可电击心律的情况下，才应考虑在第一次胸外按压循环期间使用肾上腺素。
3. 使用气管插管的信息（ETco2）
只要IPPV保持10/min的速度和一致的潮气量，测得的ETco2就能反映将二氧化碳含量相对较高的新鲜等量外周静脉血送入肺循环的情况。换句话说，只要在CPR过程中保持IPPV的一致性，ETco2就会成为循环而非通气的测量指标。
我们建议在对狗和猫进行CPR时，持续测量ETco2以指导胸外按压质量（MON-07）。我们建议优化胸外按压质量和ALS干预，使猫狗CPR期间的ETco2不低于18 mmHg（MON-10）。
此外，在CPR开始时，可使用波形二氧化碳监测仪来确认ETT的放置位置。持续检测到CO2并出现CO2波形即可确认气道中的放置位置（MON-01）。对于已安装二氧化碳检测设备（如无波形的二氧化碳检测仪）的犬和猫，ETco2≥12 mmHg可能表示ETT安放正确，而ETco2<12 mmHg则应引导施救者通过其他方法（如直接观察、颈部触诊、颈部超声）确认ETT安放（MON-01）。
对于已经进行CPR插管的犬和猫，如果尽管进行了高质量的胸外按压，但ETco2仍然很低（如<5 mmHg），我们建议通过其他方法确认气管插管，例如在胸外按压周期之间的停顿期间进行直视或胸部听诊（MON-01）。
4. 暂停和检查
完成第一个完整的2分钟胸外按压周期后，团队暂停不超过10秒钟，以评估心电图，同时由一名成员触摸股动脉脉搏（BLS-16）。必须在10秒暂停期间检查脉搏，因为无论心电图节律如何，无脉搏都应引导小组继续进行CPR。
因此，如果有足够的人员，一名队员应在暂停和检查前不久开始触摸脉搏，并在暂停期间继续触摸脉搏，以尽量减少重新开始胸外按压的延误。胸外按压可能会产生可触及的脉搏，因此只有在胸外按压停止后才能明确诊断无脉搏。
有无脉搏决定是否继续CPR，而无脉搏期间确定的心电图节律则决定CPR工作是继续沿着猫狗CPR流程的右侧还是左侧路径进行。在无脉动物中区分可电击和不可电击心律的方法见图9。
5. 有可电击心律的患者遵循左侧路径
对于伴有VF（心室颤动）或PVT（无脉室性心动过速，速率大于200次/分）的无脉患者，治疗方法是电除颤。救援人员按照图表左侧的方法恢复胸外按压，同时团队准备好电除颤仪。
我们建议使用双相除颤仪进行电除颤（ALS-11）。双相除颤仪的初始体外除颤剂量为∼2 J/kg（单相除颤仪为∼4 J/kg）。基于体重的除颤剂量见表2。除颤仪充电完毕后，在除颤垫上覆盖导电电极凝胶，并将其贴在心脏区域的胸部两侧。所有小组成员离开手术台和所有相关设备。然后电除颤仪的操作员呼叫“安全！”，并确认没有小组成员接触患者、手术台或任何相关设备。操作员才会启动电除颤。
电除颤结束后，应立即重新开始胸外按压，按压周期为2分钟，而不对心电图节律进行评估，最左侧的箭头指示救援人员回到图表顶部的蓝色BLS“2分钟，无暂停”方框。虽然疗效证据极少，但如果没有电除颤仪，也可尝试心前区搏动。
6. 非休克性心律的患者遵循右侧路径
在最初的10秒暂停后，对于无脉搏且心律不可控的患者，如晕厥（无心电活动）或无脉搏电活动（速率小于200次/分），CPR工作应按照流程的右侧进行，立即恢复胸外按压，持续完整、不间断的2分钟周期，并使用血管加压药以实现外周血管收缩，并将血流从外周转向核心器官。
建议使用的血管加压剂是1个剂量的肾上腺素（0.01 mg/kg；ALS-06）或1个剂量的血管加压素（0.8 U/kg），静脉或骨内注射，每3-5分钟给药1次，同时无脉搏动物持续保持非休克节律（ALS-07）。
如果小组认为高迷走神经张力可能是导致无休克心律的动物出现CPA事件的原因，则应在CPR过程中尽早静脉注射或静滴一次单剂量阿托品（0.04-0.054 mg/kg）（ALS-09）。在美国兽药市场上，阿托品的浓度通常为0.4-0.54 mg/mL，由于阿托品的剂量范围存在一定差异，因此在此常见浓度范围内使用0.1 mL/kg的剂量是可以接受的。阿托品不应重复使用（ALS-09、ALS-19）。
7. 绕回暂停和检查
每个完整的2分钟胸外按压周期结束后，流程会到达“暂停和检查”框。团队查看心电图，同时由一名团队成员触摸股动脉脉搏。每位小组成员大声说出他们对心律的解释，并在10秒内开始胸外按压（BLS-16），同时小组集体决定采用左侧“可电击”路径还是右侧“不可电击”路径。
如果由于无脉搏的动物有可电击心律，因此小组选择了左侧通路，进行了电除颤，完成了整个2分钟胸外按压周期，再次到达红色“暂停和检查”框，并确定动物仍然无脉搏，但有VF或PVT的可电击心律，则可电击心律被视为难治性心律。
在10秒钟内恢复胸外按压，同时再次准备好电除颤仪，将体外除颤的初始剂量加倍（ALS-12）。除颤后，立即恢复胸外按压，不间断地进行2分钟的完整循环，而不对心电图进行评估。
团队可考虑对难治性可电击节律采取其他治疗方法，这些治疗方法可包括每3-5分钟静脉注射或静滴一次0.8 U/kg血管加压素（或0.01 mg/kg肾上腺素，如果没有血管加压素）（ALS-16；ALS-07）。建议同时使用艾司洛尔（0.5 mg/kg，静脉注射或静滴3-5分钟，然后以50 μg/kg/分钟的速度进行恒速输注）（ALS-03），以减轻内源性和外源性儿茶酚胺的促心律失常β效应。
此外，建议对狗使用利多卡因（2 mg/kg，静脉注射或骨内；ALS-01），对猫使用胺碘酮（5 mg/kg，静脉注射或骨内；ALS-02）来治疗难治性休克性心律失常。抗心律失常药物应在2-4分钟内给药。
需要注意的是，该流程只是一种认知辅助工具，旨在帮助施救者在对难治性可电击心律至少进行两次电击后考虑使用这些药物，而不是作为一种定义。可电击性心律被认为是难治性的，即在进行一次电击后，再进行一个完整的2分钟胸外按压周期，仍然可以电击。
对于CPR时间超过15分钟的猫狗，可以考虑静脉或骨内注射碳酸氢钠，尤其是在测量的血液pH值<7.0（2012-ALS16）的情况下。
8. 停止CPR以恢复自主循环
如果小组到达“暂停和检查”框，并且在10秒钟的暂停期间可摸到股动脉脉搏，则表示已恢复自主循环，小组应沿着中间灰色的PCA路径进行操作。
如果怀疑在胸外按压循环期间恢复自主循环，我们建议仅在出现以下情况时中断2分钟循环：
① ETco2突然持续升高（如升高≥10 mmHg，达到≥35 mmHg）；
② 有证据表明在胸外按压期间触及动脉脉搏（BLS-17）。在缺乏二氧化碳监测数据的情况下，我们建议即使怀疑恢复自主循环，也不要中断2分钟的胸外按压周期（BLS-17）。
有关MON和ALS（包括开胸CPR）的其他治疗建议见表1和相关领域的论文。
08 讨论
本文所包含的治疗建议是在对许多物种的BLS、ALS和CPR相关监测证据进行详尽评估、分析和总结后得出的。兽医专家们根据证据评估、分析和总结，并在证据不足时参考专家意见，共同为猫狗量身定制了这些建议。
治疗建议发布后征求了兽医界的反馈意见，并根据反馈意见制定了这些最终建议。在兽医领域，我们首次使用GRADE方法进行证据评估，并将其扩展到实验动物研究，因为许多实验动物研究都是在我们感兴趣的物种中进行的。
通过广泛的文献检索和证据评估过程，我们发现在犬科和猫科CPR的大多数领域都存在许多重要的知识空白。展望未来，我们打算在出现新问题和新证据时，以较小的篇幅持续更新个别CPR治疗建议。
绝大多数用于制定治疗建议的证据在人群中都是间接的，换句话说，很少有研究是在狗或猫身上进行的，几乎所有的非人类研究都是实验性的。许多研究在干预和比较对象方面也是间接的，而且许多研究的结果与我们的PICO问题规定的结果不同。这种间接性降低了这些指南中支持大多数治疗建议的证据水平。
我们相信，兽医团队可以利用这些指南中包含的治疗建议为经历过CPA的猫狗提供高质量的CPR。但是本文所推荐的原则和实践若能与互动培训和实际操作相结合，则更有可能为患者带来积极的结果。因此，我们强烈建议兽医专业人员参加基于模拟器的培训课程，以提高他们的运动技能，并在CPR过程中例行应用这些原则。
参考文献：Burkitt-Creedon JM, Boller M, Fletcher DJ, Brainard BM, Buckley GJ, Epstein SE, Fausak ED, Hopper K, Lane SL, Rozanski EA, Wolf J. 2024 RECOVER Guidelines: Updated treatment recommendations for CPR in dogs and cats. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2024 Jul-Aug;34 Suppl 1:104-123.